Filta-Max xpress-System

Nach der Probenahme bleiben generell 0–50 ml im Gehäuse zurück. Dieser Rückstand wird im ersten Elutionszyklus aus dem Gehäuse gespült.

Ja. IDEXX bietet einen Bausatz an, der einen QF-Schaft und einen QC-Körper enthält, die auf das MKII-Filtergehäuse passen. Des Weiteren bietet IDEXX ein Probenahmekit an, das an den Probenahmeschlauch angeschlossen wird und somit eine schnelle Ankopplung am Filtergehäuse ermöglicht.

• Minimaler Eingangsdruck: 65 psig (4,5 bar)
• Maximaler Eingangsdruck: 150 psig (10,3 bar)
• Arbeitsdruck: 72,5 bis 116 psig (5 bis 8 bar)

Das endgültige Volumen beträgt 400 ml bis 450 ml.

IDEXX führte Experimente mit Oozysten und Zysten verschiedenen Alters durch und fand keine Veränderungen in der Morphologie oder Morphometrie.

Wiederfindungen sind gleich oder höher als mit Filta-Max und auch genauer.

Die Maschine wird bei der Herstellung kalibriert und benötigt keine erneute Kalibrierung. Für die Druckprüfung sind Hoch- und Niedrigdruckmanometer vorgesehen. Das Hochdruckmanometer sollte 5 bar und das Niedrigdruckmanometer 0,5 bar anzeigen.

In einer von IDEXX durchgeführten MTBF-Analyse zur Bestimmung der statistischen Zeit zwischen zwei Ausfällen funktionierte die Elutionseinheit nach 85.000 Zyklen immer noch einwandfrei.

Filta-Max xpress wurde zwar für die Verwendung eines Gesamtelutionsvolumens von 400–450 ml in einem 500-ml-Zentrifugierröhrchen optimiert, doch IDEXX hat auch die Verwendung von 2 x 250-ml-Röhrchen bei einer Zentrifugalkraft von 1500 X g und einer Dauer von 15 Minuten als alternatives Verfahren validiert. IDEXX rät den Labors, dieses alternative Verfahren zu validieren, bevor es angenommen wird.

Ja, das ist möglich.

Als Filta-Max xpress Puffer wird phosphatgepufferte Kochsalzlösung mit Tween 20 (PBST) verwendet. Anweisungen für die Zubereitung des PBST-Elutionspuffers sind auf Seite 5 der Gebrauchsanleitung (Biologisch) zum Filta-Max xpress enthalten.

Der Deckel kann gegen eine größere Ballonflasche mit einem 83 mm weiten Verschluss ausgetauscht werden.

Nach dem letzten Elutionszyklus des Tages sollte die Elutionseinheit mit analysereinem Wasser gespült werden.

Der QC-Schaft kann mit einem Alkoholtüchlein abgewischt werden. Da zum Eluieren Hochdruck verwendet wird, ist das Risiko einer Kreuzkontamination sehr gering.

Es wird geraten, Vibrationen minimal zu halten, die Zentrifuge auszuwuchten und eine etwas höhere Zentrifugalkraft (2000 g) zu verwenden.

IDEXX hat mit sehr schwierigen Matrizen aus vielen verschiedenen geografischen Regionen experimentiert.

Die Elutionseinheit eludiert Oozysten und Zysten mit Hochdruck aus dem Filtermodul, wodurch das Risiko einer Kontamination der Einheit minimal ist. IDEXX liefert mit jeder Elutionseinheit fünf Auslassventile, damit Ihr Labor die Ventile bei jeder Probe wechseln kann. Diese können manuell oder in einem Autoklaven gereinigt werden. IDEXX hat die Möglichkeit einer Kreuzkontamination unter Verwendung hoher Spitzenkonzentrationen der Zielorganismen (z. B. 106) erforscht und keinen Nachweis für eine Kreuzkontamination gefunden.